Anestezie králíků. Snížení rizika anestezie a vybavení pro anestezii králíků na veterinární klinice v Petrohradě.

Rozšíření druhového spektra zvířat chovaných doma (králíci, potkani, křečci, fretky atd.) a přítomnost chirurgické patologie u nich vyžaduje rozvoj spolehlivé úlevy od bolesti při provádění chirurgických zákroků různé délky a složitosti s minimálním dopadem na homeostáze.

Materiály a metody

Pokusy byly provedeny na 15 králících ve věku 3 měsíců, kteří byli rozděleni podle principu analogů do 5 skupin (XNUMX zvířat v každé).

Pro premedikaci byl zvířatům první skupiny injikován 2% roztok xylosin hydrochloridu (Rometar) intramuskulárně v dávce 4.0-6,0 mg/kg tělesné hmotnosti a poté byla intravenózně injikována 1% vodná emulze propofolu (Diprivan). do marginální žíly ucha v dávce 5,0-7,5 mg/kg tělesné hmotnosti.

Zvířatům z druhé skupiny byl intravenózně podáván zoletil-50 v dávce 6,6 mg/kg tělesné hmotnosti

Zvířatům ze třetí skupiny byl intramuskulárně podán rometar v dávce 4,0-6,0 mg/kg a o 20 minut později intramuskulárně zoletil-50 v dávce 5-10 mg/kg.

Ukazatele tělesné teploty, pulsu a dýchání, charakterizující celkový klinický stav zvířat, se začaly stanovovat před zavedením anestetik a poté po: po 10, 30, 60 minutách, 3 a 24 hodinách.

Při stanovení hloubky anestezie byla zohledněna výška amplitudy exkurze hrudníku, barva sliznice dutiny ústní a jazyka, tonus žvýkacích svalů, extenzory a flexory kloubů končetin. hodnotil se stupeň dilatace zornice, závažnost reakce zornice na změny osvětlení a rohovkový reflex (dotek spojivky, rohovky), stupeň citlivosti na bolest kůže (pícháním do kůže jehlou at kořen ocas, vnitřní strana stehna, nos), podmíněné reakce.

Srdeční frekvence byla stanovena pomocí vzorce pomocí záznamu EKG. Počet tepů za minutu je 3000, děleno vzdáleností mezi dvěma komplexy v mm (Martin M..2004). Záznam byl proveden ve druhém svodu s rychlostí papíru 50 mm/s z jehlových elektrod připevněných na hrudních končetinách v oblasti ramen a na pánevních končetinách v oblasti kyčle.

Výsledky výzkumu.

Skupina 1: 5 minut po podání Rometaru měli králíci z první skupiny zúžení zornice, zvířata sklonila hlavu. Byla pozorována mírná sedace a mírné snížení citlivosti na bolest. Ale i když se jim snažili dát polohu na boku, zvířata odolávala.

10 minut po premedikaci se sedace zintenzivnila, nicméně zvířata vykazovala poměrně aktivní odpor k některým manipulacím spojeným s fixací v poloze na boku.

5 minut po intravenózním podání diprivanu králíci vykazovali výraznou relaxaci svalů končetin, ale rohovkový reflex a citlivost na bolest zůstaly, což vylučovalo možnost provedení i menších chirurgických zákroků. Zvířata se začala samostatně pohybovat během 30-35 minut po podání propofolu.

Zvířata v této skupině vykazovala krátkodobé mírné zvýšení tělesné teploty a po podání Diprivanu začal pokles: po 5 minutách o 0,8 °C, po 30 minutách o 2,2 °C a po hodině o 2,3 °C ( Obr. 1).

U králíků této skupiny došlo po premedikaci Rometarem ke snížení srdeční frekvence na 156 tepů/min, což je o 35 % méně než výchozí údaje, které pokračovaly po podání propofolu, a po 30 minutách tendence k pozvolnému došlo k normalizaci tohoto ukazatele (obr. 2).

Popsané změny byly doprovázeny poklesem dýchání: 15 minut po premedikaci 10 dechů. dv/min, 5 minut po podání dpprivanu na 18 dechů. tep/min oproti původní hodnotě, která byla 70 dechů. Po 30 minutách bylo zaznamenáno 48 tepů za minutu. a jen o hodinu později se objevily známky počínající obnovy dechové frekvence (56 dechů za minutu) (obr. 3).

Následné studie ukázaly, že tělesná teplota, puls a frekvence dýchání 24 hodin po pokusu o uvedení králíků do stavu celkové anestezie pomocí této metody se nelišily od hodnot získaných před zahájením podávání léku.

Skupina 2: Po intravenózním podání 5% roztoku zoletpla králíkům z druhé skupiny byla pozorována okamžitá svalová relaxace. Reflex rohovky a citlivost na bolest chyběly po 1 minutě, ale objevily se znovu o 5 minut později. Po hodině byla motorická aktivita králíků obnovena a po 1,5 hodině se již byli schopni pohybovat samostatně.

Při studiu ukazatelů charakterizujících klinický stav pokusných králíků této skupiny byl zjištěn pokles tělesné teploty, který začal 5 minut po podání zoletilu a po 30 minutách byla tělesná teplota 1,2 °C a o hodinu později 1,6 °C. C pod počáteční úroveň (obr.1).

Po podání léku bylo zaznamenáno krátkodobé zvýšení srdeční frekvence – po 10 minutách o 11 tepů/min, které bylo vystřídáno poklesem (o 28 tepů/min méně než výchozí hodnota) (obr. 2).

Všechny popsané změny byly doprovázeny poklesem počtu dechových pohybů. 30 minut po podání roztoku zoletilu se začala obnovovat hloubka a frekvence dýchání, ale počáteční úrovně bylo stejně jako u všech ostatních ukazatelů dosaženo během jednoho dne (obr. 3).

Skupina 3: Po podání Rometaru byly všechny změny stavu zvířat ze třetí skupiny podobné změnám zjištěným u králíků z první skupiny.

5 minut po intramuskulární aplikaci zoletilu došlo k úplné svalové relaxaci, chyběl rohovkový reflex a citlivost na bolest a zornice se rozšířila.

V průměru se pro skupinu po 30 minutách obnovil rohovkový reflex a citlivost na bolest. Po hodině se zvířata pokusila vstát a 1,5 hodiny po podání Zoletilu se začala samostatně pohybovat. Absence citlivosti na bolest po dobu 30 minut umožňuje provádět operace, jako je ovariohysterektomie samic, kastrace samců, šití ran atd.

Po podání zoletilu se u králíků začala snižovat tělesná teplota, která byla po 10 minutách o 0,4 °C, po 30 minutách o 1,4 °C a po hodině o 2,5 °C pod výchozí hodnotu (obr. 1). .

Pokles tepu pozorovaný po podání Rometaru, po podání Zoletilu byl nahrazen jeho postupnou normalizací (po 30 minutách – 172 tepů/min), po které byla opět pozorována bradykardie (155 tepů/min 1 hodinu po zahájení uvedení králíků do stavu celkové anestezie) (obr. .2).

Popsané změny byly doprovázeny poklesem dýchání. Počet dechových pohybů 30 minut po podání zoletilu byl minimální (38 dechů za minutu). Poté se počet dechových pohybů postupně zvyšoval a po 3 hodinách to bylo 76 za minutu (obr. 3).

Pozorování prováděná po 24 hodinách ukázala, že celkový stav a dráždivost potravy králíků, stejně jako jejich příjem potravy, byly dobré. Údaje o teplotě, pulzu a dýchání se významně nelišily od údajů zjištěných před zahájením podávání studovaných léků.

Závěr a doporučení

Provedené studie nám tedy umožňují zvážit nejoptimálnější volbu metody prováděné u zvířat třetí experimentální skupiny: celková anestezie králíků pomocí Rometaru pro premedikaci a na jejím pozadí – Zoletil v uvedených dávkách.

časopis “Veterinární klinika” č. 1 2008

• Вы здесь:
• Hlavní
• veterinářství
• U zvířat
• Králíci
• Anestezie pro králíky

• METABOLISMUS SACHARIDŮ
• OTRAVA DUSIČNY A DUSIČNANY
• ENDEMICKÁ struma
• TETANIE PASTVINY
• OBSTRUKCE JÍCNU (OBSTRUCTIO OESOPHAGI)

© 2025 Web o zvířatech: veterinární lékařství, krmení, údržba

ON. Melentyev kandidát veterinárních věd, docent Ústavu chorob ptáků, ryb, včel a kožešinových zvířat. Federální státní vzdělávací instituce vyššího odborného vzdělávání “St. Petersburg State Academy of Veterinary Medicine”.

Faktory ovlivňující riziko anestezie u králíků

Existuje mnoho faktorů, které ovlivňují riziko anestezie, nejvýznamnější jsou stres, hypoxie a předchozí onemocnění. Klinické vyšetření před anestezií poskytuje představu o celkovém stavu králíka. Vážení je nutné pro přesný výpočet dávek užívaných léků. Dobré vybavení pro anestezii, správné výpočty dávek a sledování průběhu anestezie ji činí bezpečnější.

S anestezií králíků je spojeno mnoho problémů: stres, hypoxie a již existující onemocnění. Klinické vyšetření před anestezií dává představu o celkovém zdravotním stavu králíka. K výpočtu dávek léků, které mají být použity, je nutná přesná hmotnost. Dobré anesteziologické vybavení, správný rozsah léků a pozorný anesteziolog zvyšují bezpečnost anestetika.

Během desetiletí používání králíků jako laboratorních zvířat a vývoje veterinární medicíny pro králíky chované jako domácí mazlíčky byly učiněny pokusy využít většinu léků používaných v lékařské a veterinární anesteziologii [1; 5; 10; 12]. Nashromážděné zkušenosti ukazují, že mnoho léků používaných k sedaci, anestezii a analgezii, ale účinné a bezpečné dávky léků, jejich farmakodynamika u těchto zvířat a použití lékových kombinací, mají významné rysy [9].

Anestezie je právem mnohými veterináři a majiteli vnímána jako vysoce rizikový výkon, i když některé v současnosti dostupné léky lze použít zcela bezpečně [4]. Studie úmrtnosti spojené s anestezií a sedací u psů, koček a králíků publikované společností Brodbelt DC. at al. v roce 2008 ukázaly, že průměrná úmrtnost psů je 0,17 %, koček 0,24 % a králíků 1,39 % [3]. Při vývoji anestetického protokolu je třeba vzít v úvahu významné biologické vlastnosti těchto zvířat, aby se snížilo riziko.

Faktorů, které ovlivňují riziko anestezie, je mnoho, nejvýznamnější jsou stres, hypoxie a předchozí onemocnění. Často je u jednoho králíka přítomno několik těchto faktorů. Vliv mají také hlasité zvuky, neznámé prostředí a pach jiných zvířat [10].

Intubace králíka

Intubace je obtížná vzhledem k anatomickým rysům dutiny ústní, nosohltanu a průdušnice. Kvůli malému objemu hrudníku se u králíků často vyvine hypoxie. Dechový objem je pouze 4-6 ml/kg a plíce mají ve srovnání s břišními orgány malý objem. Nádech a výdech se provádějí především pohyby bránice, nikoli mezižeberními svaly. Tato poloha králíka během anestezie, kdy břišní orgány tlačí na bránici, může rušit dýchací pohyby [7].

I navenek zdraví mohou být skrytými přenašeči takových infekčních onemocnění, jako je pasteurelóza a encefalitozoonóza. Poškození plic, způsobené především Pasteurella multocida, může bránit výměně plynů v alveolech. Poškození ledvin a mozku způsobené encefalitozoonózou může vést k dalším komplikacím.

Kromě toho, pokud králík nebyl před plynovou anestezií pod sedativy, pocítí pach plynu zadržuje dech a dochází k apnoe v kombinaci s bradykardií a hyperkapnií. Ve studii Flecknella et al. (1996), období apnoe trvalo od 30 sekund do 2 minut při použití isofluranu a halotanu přes obličejovou masku a v indukční komoře [6]. Některá anestetika (medetomidin/ketamin) způsobují pokles krevního tlaku a okysličení, čímž se zvyšuje riziko hypoxie [8].

Zubní onemocnění a dysfunkce střev způsobují vyčerpání a slabost, což může vést k dehydrataci a nerovnováze elektrolytů. Obézní králíci jsou náchylní k rozvoji hypertenze a srdeční hypertrofie. Hyperinzulinémie, hyperglykémie a zvýšené hladiny triglyceridů jsou v séru obézních králíků běžné a jaterní lipidóza se rychle rozvíjí po krátké době bez potravy, zvláště pokud je králík velmi stresovaný.

Obézní králíci jsou nejobtížnějšími pacienty pro chirurgické operace [11]. Uvolňování endogenních katecholaminů v důsledku stresu a bolesti může být příčinou srdeční arytmie. Králíci jsou extrémně citliví na bolest, zvláště po operacích břicha a odstranění řezáků. Bolest je zvláště silný stresor, který vede ke snížené chuti k jídlu, zpomalení střevní motility a může způsobit střevní stázu a nakonec fatální jaterní lipidózu. Vrozené srdeční vady, jako je defekt komorového septa, vedou ke kardiomyopatii, zejména u králíků obřích plemen [13].

Klinické vyšetření před anestezií

Klinické vyšetření před anestezií dává představu o celkovém stavu králíka. Někteří oslabení králíci vyžadují před anestezií doplnění výživy. Pacienti, kteří jsou dehydratovaní, v šoku nebo hypotenzní, vyžadují intravenózní nebo intraoseální tekutiny. Králíci nezvrací [14], takže držení bez potravy není nutné, i když krátká doba 1-2 hodin může zajistit, že v tlamě nejsou žádné částice potravy a žaludek není plný.

Vážení je nutné pro přesný výpočet dávek užívaných léků. Množství krmiva v gastrointestinálním traktu se mění v různých denních dobách a může ovlivnit výsledky vážení. Králíci mohou mít v trávicím traktu značné množství potravy, zejména ve slepém střevě. Tučná zvířata vyžadují nižší dávky léků než štíhlá zvířata, proto někteří autoři doporučují vypočítat dávky na základě rychlosti metabolismu, která závisí na tělesné hmotnosti [2].

Během anestezie lze snížit riziko hypoxie umístěním tak, aby břišní orgány netlačily na bránici. Protažení krku a vyjmutí jazyka z úst umožňuje nejen sledovat barvu sliznice, ale také odstraňuje spodinu jazyka z hltanu a otevírá dýchací cesty.

Dýchací pohyby jsou z velké části řízeny pohyby bránice a vizuální počítání může být obtížné také při sledování dýchání. Ve všech případech je vhodnější použít pacientský monitor.

Během anestezie vyžadují neustálý přísun kyslíku. Okysličení před anestezií snižuje riziko hypoxie, pokud králík zadrží dech. Kyslík lze podávat obličejovou maskou (obrázek 1), endotracheální nebo nosní trubicí nebo dokonce trubicí zavedenou do krku ústy.

Foto 1. Transparentní maska ​​na obličej

Vyvážená anestezie

Stejně jako u jiných živočišných druhů pouze vyvážená anestezie umožňuje úspěšnou operaci. Příliš lehká anestezie vede k probuzení zvířete při operaci s prudkým podrážděním tkání a projevuje se pohybem zvířete nebo dokonce křikem u takového pacienta může dojít k hypoxii a cyanóze. Reakce anesteziologa na delší zadržení dechu – snížení koncentrace anestetika – může vést k příliš lehké anestezii a vzniku citlivosti. K prohloubení anestezie je nutné zvýšení koncentrace plynu. Pokud králík není zaintubován, zápach plynu způsobí zadržování dechu a průtok plynu se zastaví, což znesnadňuje dosažení chirurgické anestezie. Pomalé zvyšování koncentrace plynu po účinné premedikaci zabraňuje zadržování dechu při použití obličejové masky.

Endotracheální intubace

Endotracheální intubace (foto. 2) zabraňuje vzniku problémů spojených se zadržením dechu, umožňuje zavedení kyslíku a výrazně snižuje mortalitu. Endotracheální intubace umožní v případě potřeby i umělou ventilaci. Dobrá pooperační péče a adekvátní analgezie jsou zásadní pro snížení bolesti a stresu, obnovení chuti k jídlu a prevenci rozvoje jaterní lipidózy.

Foto 2. Intubace králíka s vizualizací hrtanu

Průhledná obličejová maska ​​umožňuje pozorovat barvu sliznic. Je nutné mít sadu malých endotracheálních rourek (2,0-5,0 mm). Králíci mají malý dechový objem (4-6 ml/kg) a anestetikum cirkuluje v malém objemu. Přestože použití ústních dilatátorů není nutné, umožňují lepší sledování stavu úst a hrtanu. Laryngoskop s malou čepelí (0 nebo 1) lze použít k zobrazení hrtanu a usnadnění intubace.

Pulzní oxymetr

Pulzní oxymetr lze použít jako součást anesteziologického zařízení (foto 3), nejlepší místo pro připevnění je jazyk, ale to není možné, pokud se k anestezii používá obličejová maska. Uspokojivý signál lze získat z tříselných záhybů nebo ze kořene ocasu, pokud je možné vytrhávání chlupů a umístění senzoru, nebo lze použít rektální sondu.

Foto 3. Pulzní oxymetr

Použití monitoru dýchání závisí na velikosti králíka. Elektrokardiograf lze použít jako srdeční monitor. Rektální teplotu lze určit standardním nebo digitálním teploměrem s dálkovým senzorem. Sonda by měla být lubrikována a opatrně zavedena do konečníku, aby se nepřetržitě sledovala rektální teplota po celou dobu anestezie.

Dobré anesteziologické vybavení, správné výpočty dávek a sledování průběhu anestezie u králíků ji tedy činí bezpečnější. Volba metod anestezie zvířete a používaných léků závisí na celkovém stavu pacienta, povaze a plánované délce operace, možnostech kliniky a majitele, přičemž důležitou roli hrají praktické zkušenosti veterinárního lékaře. role.

1. Plumb, Donald K. Farmakologická léčiva ve veterinární medicíně // M., 2002. – 856 s.
2. Aeschbacher, G. Králičí anestezie // Kompendium o dalším vzdělávání, 1995, 17, 1003–1011
3. Brodbelt DC, Blissitt KJ, Hammond RA, Neath PJ, Young LE, Pfeiffer DU, Wood JL. // Riziko smrti: důvěrné vyšetřování perioperačních úmrtí malých zvířat. Veterinář Anaesth Analg. 2008 září;35(5):365-73
4. Calasans-Maia MD, Monteiro ML, Ascoli FO, Granjeiro JM. Králík jako zvířecí model pro experimentální chirurgii // Acta Cir Bras. 2009 Jul-Aug;24(4):325-8
5. Domácí králíci: Nemoci a paraziti / N. M. Patton, K. W. Hagen, J. R. Gorham a R. E. Flatt. Oregonská státní univerzita, 2008. – 30 rub.
6. Flecknell, PA, Cruz, IJ, Liles, JH, Whelan, G. Indukce anestezie halotanem a isofluranem u králíka: srovnání použití obličejové masky nebo anestetické komory // Lab Anim., 1996; 30, 67–74
7. Gillett, C.S. Vybrané dávky léků a klinická referenční data // In The Biology of the Laboratory Rabbit, 2nd edn. (P. J. Manning, D. H. Ringler, C. E. Newcomer, ed.), Academic Press, 1994; s. 468–472
8. Grint NJ, Murison PJ. Srovnání kombinací ketamin-midazolam a ketamin-medetomidin pro indukci anestezie u králíků // Vet Anaesth Analg. březen 2008;35(2):113-21
9. Inglis S, Strunk A. Králičí anestezie // Lab Anim (NY), březen 2009;38(3):84-5
10. Keeble E., Meredith A. Rabbit Medicine & Surgery (Self-assessment Color Review) // Manson Publishing, leden 2006, 192 r.
11. Lichtenberger M, Ko J. Anestézie a analgezie pro malé savce a ptáky // Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2007 květen;10(2):293-315
12. Mason DE Anestezie, analgezie a sedace pro malé savce // U fretek, králíků a hlodavců, klinická medicína a chirurgie. (EV Hillyer, KE Quesenberry, ed.). 1997. — s. 378–391
13. Králíci: Zdraví, chov a nemoci / VCG Richardson. Blackwell Science Ltd, 2000.- 184 rub.
14. Klinická farmakologie malých zvířat / Jill Maddison a kol. – Elsevier Limited, 2008. – 589 s.